文献情報
文献番号
201419080A
報告書区分
総括
研究課題名
顔面肩甲上腕型筋ジストロフィーのエピジェネティック病態解明と革新的治療法の開発
課題番号
H24-神経・筋-一般-004
研究年度
平成26(2014)年度
研究代表者(所属機関)
田中 裕二郎(東京医科歯科大学 難治疾患研究所遺伝生化学分野)
研究分担者(所属機関)
- 横田隆徳(東京医科歯科大学 医学部脳神経病態学分野)
- 森岡勝樹(東京医科歯科大学 難治疾患研究所生命情報学分野)
研究区分
厚生労働科学研究費補助金 疾病・障害対策研究分野 【補助金】 障害者対策総合研究
研究開始年度
平成24(2012)年度
研究終了予定年度
平成26(2014)年度
研究費
4,924,000円
研究者交替、所属機関変更
-
研究報告書(概要版)
研究目的
顔面肩甲上腕型筋ジストロフィー(Facioscapulohumeral muscular dystrophy, FSHD)は、4番染色体テロメア近傍のD4Z4反復配列にコードされるホメオボックス転写因子DUX4の異常発現が原因と考えられている。D4Z4反復配列の短縮、SMCHD1遺伝子変異、ASH1ヒストンメチル基転移酵素がD4Z4の転写活性化に関係することから、FSHDはエピジェネティックな疾患である。その複雑な病態のために、本邦ではFSHDの基礎的な分子機構の解析が遅れていた。本研究では、我々がこれまでに蓄積してきたクロマチン制御因子に関する解析手法を駆使し、FSHDの病態解明と新しい分子標的治療薬及び遺伝子診断法の開発を目指している。
研究方法
昨年度に引き続きASH1を始めとするクロマチン制御因子欠損細胞の作成、ASH1ノックアウトマウスの表現型解析、D4Z4トランスジェニックマウス(FSHD疾患モデル動物)の交配、D4Z4反復配列を含むBACクローンのシーケンシング及び解析アルゴリズムの検証(森岡との共同研究)、lncRNAを標的とするノックダウン人工核酸LNA gapmerの合成(横田との共同研究)、さらに患者ゲノムからD4Z4領域を選択的に精製するための技術開発を行った。
結果と考察
【クロマチン制御因子ノックアウト細胞の作成】マウス筋芽細胞株C2C12においてASH1、Suz12、G9a (Ehmt2)、SMCHD1をそれぞれ単独或いは複合欠損する細胞を樹立した。Ash1、Suz12、G9aについてはそれぞれ12~30クローン当たり1個のホモ欠損細胞を樹立することに成功した。さらにAsh1欠損細胞を用いてSuz12またはG9aをノックアウトし、Ash1+Suz12及びAsh1+G9aの組み合わせでホモ複合欠損する細胞株を樹立した。
【ASH1ノックアウトマウスの作成】ASH1のエクソン2の2箇所に於ける4bp欠損、13bp欠損、1bp挿入といういずれもフレームシフトを来すナンセンス変異体を樹立した。生後0日まではメンデルの法則に従ってホモ欠損マウスが誕生し、マクロ形態学的には胎生期を通じて特に異常を認めないことが分かった。生後1日を経過するとASH1ホモ欠損マウスは1匹も観察されないことから、生後致死性を示すことが明らかになった。また、新たにASH1の補酵素であるS-adenosylmethionine (SAM)結合ポケットを形成するZnフィンガードメインのシステイン残基Cys2220を欠損するノックアウトマウスを樹立した。
【D4Z4ゲノム領域の精製技術開発】FLAGタグの付いたdCas9と、4番染色体のD4Z4配列或いは10番染色体のD4Z4相同領域の配列に特異的なガイドRNAを合成し、それぞれ標的DNAと選択的に結合するかどうかを検証した。それぞれ予想された標的配列と結合することを確認した。
【ASH1ノックアウトマウスの作成】ASH1のエクソン2の2箇所に於ける4bp欠損、13bp欠損、1bp挿入といういずれもフレームシフトを来すナンセンス変異体を樹立した。生後0日まではメンデルの法則に従ってホモ欠損マウスが誕生し、マクロ形態学的には胎生期を通じて特に異常を認めないことが分かった。生後1日を経過するとASH1ホモ欠損マウスは1匹も観察されないことから、生後致死性を示すことが明らかになった。また、新たにASH1の補酵素であるS-adenosylmethionine (SAM)結合ポケットを形成するZnフィンガードメインのシステイン残基Cys2220を欠損するノックアウトマウスを樹立した。
【D4Z4ゲノム領域の精製技術開発】FLAGタグの付いたdCas9と、4番染色体のD4Z4配列或いは10番染色体のD4Z4相同領域の配列に特異的なガイドRNAを合成し、それぞれ標的DNAと選択的に結合するかどうかを検証した。それぞれ予想された標的配列と結合することを確認した。
結論
本研究は、病態解明、新規治療法の開発、新規診断法の開発という三つの柱を掲げて進めて来たが、その中、病態機構については遺伝子ノックアウト細胞やASH1ノックアウトマウス、D4Z4トランスジェニックマウスといった研究材料の準備がほぼ完成し、これから実際の解析に移行する段階になっている。治療法についても、lncRNAに対するLNA gapmerの合成とアッセイ系(DBE-T発現ベクター、D4Z4トランスジェニックマウス)の確立まで進めることが出来た。診断法については、D4Z4領域のゲノムDNA精製からシーケンシングまたはDNA蛍光染色による長さの測定まで、基本的な条件をクリアすることが出来、三つの課題の中では最も進めることが出来た。本研究は三次公募であったため、実際の研究機関が3年に満たないことから一部予定通り完成していない課題も残されているが、今後早期の完成を目指して鋭意努力したい。
これまで、FSHDの診断には放射性同位元素を用いる方法しかなく、特に本邦では確定診断例が少なかった。海外では、これまで10万人に約5人と言われていたFSHD患者が12人という統計報告が昨年出ている。本研究を契機として日本筋ジストロフィー協会に設置されたFSHD分科会においても、臨床医からFSHDを疑われる症例は非常に多い印象があるとの発言もあり、今回作動原理を証明した新しい診断法について、保険適用を目指してさらに必要とされる検出感度と特異性の検証を進めて行きたい。
これまで、FSHDの診断には放射性同位元素を用いる方法しかなく、特に本邦では確定診断例が少なかった。海外では、これまで10万人に約5人と言われていたFSHD患者が12人という統計報告が昨年出ている。本研究を契機として日本筋ジストロフィー協会に設置されたFSHD分科会においても、臨床医からFSHDを疑われる症例は非常に多い印象があるとの発言もあり、今回作動原理を証明した新しい診断法について、保険適用を目指してさらに必要とされる検出感度と特異性の検証を進めて行きたい。
公開日・更新日
公開日
2015-09-17
更新日
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